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基因表达调控方法的比较与应用

基因表达调控方法的比较与应用

—siRNAshRNACRISPR

我们在阅读文献和设计课题时,会发现研究者通常会选择构建例如siRNA、shRNA和基因敲除等载体来调控基因的表达,进而探究基因功能和分子机制。值得注意的是,在部分近几年的文章中,我们发现许多研究者选择通过构建CRISPR文库筛选关键基因,成功发现了基因的潜在功能和相关通路,为下一步的研究提供了极大便利。

那么,以上提到的这些实验方法在课题研究中能达到哪些目的呢?我们在设计自己的课题时又该如何对这些方法进行选择呢?下面就带大家一起来了解siRNA、shRNA和基因敲除载体,以及近几年兴起的CRISPR文库筛选这些实验方法各自的特点!

       一、基于RNAi的siRNA和shRNA导致基因沉默或抑制

小干扰RNA(small interference RNA, siRNA)和短发夹RNA(small hairpin RNA, shRNA)可诱导RNA干扰(RNA interference, RNAi)效应,通过目标基因的mRNA选择性失活来实现沉默或抑制目标基因的表达。

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1. 基于RNAi的siRNA和shRNA的作用原理[1]

 

siRNA 3’端含有两个突出的非配对碱基,通过与目标mRNA互补结合序列特异性地实现mRNA降解,而shRNA包含一个环结构,可加工形成siRNA,也可通过与目标mRNA互补结合序列特异性地实现靶mRNA降解。利用载体把shRNA导入细胞核内,当载体稳定地整合到基因组中后,能被传递到子代细胞中,从而使基因的沉默可被遗传(图1)。

表1. siRNA与shRNA之间的比较:

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       下调基因的表达可通过干扰或敲除的方式实现。其中干扰稳转株不能控制shRNA插入染色体的位置,且染色体上的shRNA有时会丢失。此外,shRNA也存在一定程度的脱靶风险,构建shRNA载体时通常会同时选择多个靶位点。基因敲除是利用CRISPR/Cas9技术在基因组水平上通过基因序列的改变使其基因功能丧失,敲除效果稳定,且不能恢复,但获得基因敲除稳转株的周期较长,成本稍高,此时需要我们通过综合评判来选择下调基因表达的方式。

       二、基于CRISPR/Cas9的单基因敲除

表2. shRNA和基因敲除的比较:

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       近几年来,不少研究者通过CRISPR文库功能性筛选和富集,进而发掘出特定表型相关基因的工作被发表在CNS上,该方法也在近几年快速发展,逐渐成为一种新的趋势。三、基于CRISPR/(d)Cas9的基因激活、抑制和敲除文库

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图2. CRISPRa和CRISPRi的作用机制[2]

根据目的和作用效果的不同,CRISPR文库可分为CRISPR激活库(CRISPR activation,CRISPRa)、CRISPR抑制库(CRISPR inhibition,CRISPRi)和CRISPR敲除库(CRISPR Knockout,CRISPRko)。其中,CRISPRko是利用CRISPR-Cas9系统,从基因组学层面对基因进行敲除,在此基础上,研究中通过将Cas9蛋白进行催化失活,形成dCas9(dead Cas9),构建了CRISPR-dCas9系统,利用该系统,当dCas9与基因启动子的阻遏结构域融合,由于转录机制的空间位阻效应,可导致基因表达的抑制,从而能实现高效的转录沉默,即CRISPRi。当与转录激活因子(如VP64和p65)融合的dCas9靶向启动子和增强子区域,可导致基因表达的上调,即CRISPRa(图2)。

表3. CRISPRko、CRISPRa和CRISPRi的比较:

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以上就是关于siRNA、shRNA基因敲除,以及CRISPR文库(CRISPRko、CRISPRa和CRISPRi)各自的功能和适用场景,大家可根据课题需求,选择合适的方法,定能事半功倍!

参考文献

       [1] Lingor P. Regulation of Cell Death and Survival by RNA Interference–The Roles of miRNA and siRNA. Apoptosome, 2010: 95-117.

       [2] Gilbert LA, Larson MH, Morsut L, et al. CRISPR-mediated modular RNA-guided regulation of transcription in eukaryotes. Cell, 2013, 154(2): 442-451.

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